2021-07-05 12:48:06
聚合酶链式反应 ( polymerase chain reaction，PCR) 提出至今已有20年时间，期间PCR已发展成为分子生物学领域的一项关键技术和常规技术，极大地推动了生命科学各个领域的发展。特别是90 年代后期，美国 ABI 公司推出的实时荧光定量PCR( real time PCR，qPCR) 技术及相关产品更是将PCR由体外合成及定性/半定量检测技术发展成为一种高灵敏、高特异性和精确定量的基因分析技术。
尽管经过十几年时间的迅速发展，qPCR 技术已经用于除外伤和营养缺乏症外所有疾病的诊断，但是，在 PCR扩增过程中影响其扩增效率的因素有很多，不能保证在反应过程中扩增效率保持不变和实际样品与标准样品以及不同样品之间的扩增效率是相同的，由此导致其定量分析所依赖的基础——循环阈值(CT)不是恒定不变的。因此 qPCR 的定量只是“相对定量”，其准确度和重现性依然不能够满足分子生物学定量分析的要求。
20 世纪末，Vogelstein等提出数字PCR(digital PCR，dPCR) 的概念，通过将一个样本分成几十到几万份，分配到不同的反应单元，每个单元包含一个或多个拷贝的目标分子( DNA 模板) ，在每个反应单元中分别对目标分子进行PCR扩增，扩增结束后对各个反应单元的荧光信号进行统计学分析。与 qPCR 不同的是，数字PCR不依赖于CT值，因此不受扩增效率影响，扩增结束后通过直接计数或泊松分布公式来计算每个反应单元的平均浓度(含量)，能够将误差控制在5%以内，数字PCR 可以不需要对照标准样品和标准曲线来实现绝对定量分析。
该技术提出至今虽然只有十几年时间，但是由于其独特的技术优势和应用前景，使得其产业化发展相当迅速。迄今为止，已有包括Fluidigm和 Bio-Rad等几家公司相继推出了数字 PCR 产品，并已经应用于单细胞分析、癌症早期诊断和产前诊断等研究领域。目前，有关数字 PCR 技术的综述类文献并不多见，本文将在现有文献基础上，对该技术的原理、定量方法、分类及应用进行评述，并对发展趋势进行展望。
最初 Vogelstein等提出的数字 PCR 是在96孔板中进行的，如图 1 所示。DNA 模板被稀释成大约平均每两个孔内有一个拷贝的浓度，在经过优化的实验条件下进行 PCR 扩增。他们设计了两种带有不同荧光基团的分子信标探针分别与 PCR 产物杂交，其中一种探针可以与野生型和突变型两种产物杂交，另一种探针只与野生型杂交，通过直接计数每个孔内的荧光信号得到同一样品中等位基因(或野生型与突变型) 的数目和比值，并利用统计学方法分析样品间的显著性差异。目前的数字 PCR 技术主要采用分子信标和TaqMan探针两种方式对 PCR 产物进行荧光标记。其中分子信标法(如图1b所示) 通过一对通用引物得到包括野生型和突变型 在内的 PCR 产物，再经过不对称 PCR( asymmetric PCR) 得到单链 DNA 分子与两种荧光分子信标分别杂交，利用荧光颜色区别野生型和突变型，通过具有不同荧光反应单元数量的多少和比率进行分析，这种方法也被称为数字SNP( digital singlenucleotide polymorphism，digital SNP) 。TaqMan 探针法则可用于基因表达分析和单细胞多重 PCR等。Vogelstein 等提出一种基于磁珠和微乳液的固相数字 PCR 技术——BEAMing ( beads， emulsion，amplification，magnetics) ，原理如图 1c 所示。BEAMing 技术通过将引物化学键合在磁珠表面，再将单个磁珠与目标分子包裹在微乳液滴中进行 PCR 扩增，将野生型和突变型目标分子在磁珠表面进行复制。扩增结束后进行破乳，再利用流式细胞技术进行荧光计数。该技术还通过预扩增反应，提高了系统的灵敏度，适合用于低概率的等位基因突变分析。BEAMing 技术可通过固液分离除去多余荧光探针，降低背景干扰，可采用普通荧光探针代替高成本分子信标和 TaqMan 探针，降低成本。但是该方法需要将单个目标分子与单个磁珠包裹在同一液滴中，增加了操作的复杂性和难度，需要进行大量条件优化实验。此外， Zhong等提出通过调节荧光探针浓度实现多重PCR的技术，实现了SMA基因拷贝数变异和 c．815A＞G突变位点等五重PCR分析，突破了通常只有4个荧光通道的局限。
其中，N0 为初始模板的拷贝数，Nt 为第CT个循环时产物的拷贝数，E为扩增效率。将上式两边取对数，得到
对于一个特定的PCR反应，扩增效率E和CT个循环时的拷贝数Nt均为定值，因此，CT值与初始模板拷贝数N0的对数成反比关系。然而，在PCR 扩增过程当中影响其扩增效率的因素有很多，比如酶和引物浓度等，因此很难保证扩增效率不变，导致定量PCR结果的准确度和精密度难以保证。
与传统qPCR方法不同的是数字PCR采用直接计数的方法进行定量分析，也就是在PCR扩增结束后有荧光信号(产物) 记为 1，无荧光信号(产物) 记为 0，有荧光信号的反应单元中至少包含一个拷贝的目标分子。理论上，在样品中的目标DNA浓度极低的情况下，有荧光信号的反应单元数目等于目标DNA分子的拷贝数。但是，在通常情况下，数字PCR的反应单元中可能包含两个或两个以上的目标分子，这时可以采用泊松概率分布公式( Poisson distribution) 进行计算。
上式中λ为每个反应单元中包含目标DNA分子的平均拷贝数(浓度)，p为在一定的λ条件下，每个反应单元中包含 k 拷贝目标 DNA 分子的概率。λ由样品溶液的稀释系数 m 决定，有 λ= cm，其中c为样品的原始拷贝数(浓度) 。当 k = 0 (不含目标 DNA 分子) 时，上式可简化为 p = e^－λ = e^－cm， p 可以看作是无荧光信号的反应单元数与反应单元总数的比值，即
其中，n为反应单元总数，f为有荧光信号的反应单元数。上式两边取对数( ln) 得到
从数字 PCR 反应单元总数和有荧光信号的单元数以及样品的稀释系数，就可以得到样本的最初拷贝数(浓度) 。数字PCR的定量方法不依赖于扩增曲线的循环阈值，因此不受扩增效率的影响，也不必采用看家基因( house-keeping gene)和标准曲线，具有很好的准确度和重现性，可以实现绝对定量分析。
数字 PCR 的灵敏度也可以称之为分辨率，指的是对目标基因或突变的识别能力。它除了与检测器的灵敏度和PCR扩增效率等因素有关外，很大程度上取决于反应单元的数目n。理论上每个反应单元至多有一个拷贝的 DNA 分子，相同体积的情况下， n = 10^2 时，该方法的最大分辨率为1 /100，也就是说样品浓度最低为1%可以被检出。如果 n = 10^4 时，就可以从10^4个分子中检测到1个靶标，即样品浓度最低为 0. 01% 可以被检出。因此，反应单元的数目越多，数字PCR的灵敏度越高，准确度也越高。
数字 PCR 技术提出至今，相关技术和产业化发展都非常迅速。迄今为止，数字 PCR 技术主要有三类: 微反应室/孔板、大规模集成微流控芯片和液滴数字PCR系统。
传统 PCR 或定量 PCR 反应都是在96/384孔板中进行的，因此早期的数字PCR技术也采用 96 /384孔板作为反应单元。但是数字PCR技术的灵敏度取决于反应单元的总数n，因此，理论上反应单元数越多越有利于提高灵敏度和准确度，普通的96 /384孔板无法满足检测的需要。而且，在96 /384 孔板中进行的PCR反应体系通常大于5μl，由试剂消耗引起的高成本问题令人望而却步。针对上述问题， Morrison 等在25mm×75mm不锈钢芯片上刻蚀了3072个直径为300μm的微反应室(如图2a所示)，每个反应单元的体积降低至33 nl。该芯片可在商品化 PCR 仪上使用，与384 孔板的检测灵敏度相当，但反应体积降低为原来的1/64，样品通量提高了24倍。随着反应单元数目的成倍增加，反应体积从微升级降至纳升级，传统的操作人员采用移液器加试样的方式已经无法满足快速精准取样的要求，因此需要借助高通量自动点样仪或机械手等设备，这无疑大幅提高了系统的成本和操作的复杂性。
微流控芯片技术的发展为我们提供了一个实现低成本、小体积和高通量平行PCR分析的理想平台。2000年，Unger等采用多层软刻蚀 ( multilayer soft lithography，MSL) 技术在聚二甲基硅氧烷( polydimethylsiloxane，PDMS) 微流控芯片上设计并加工高密度微泵微阀结构(如图2b所示) ，他们将这种芯片称为IFC( integrated fluidic circuit)。IFC 利用PDMS材料具有高弹性的特点，通过多层软刻蚀技术在芯片上加工交织的液体和气体通道结构，可以快速并准确地将流体分成若干个独立的单元，进行多步平行反应。2006 年Ottesen等将IFC芯片用于数字PCR分析，通过精准控制微泵微阀的开启和关闭，一步操作即可将一个样本平均分配到 1176个反应单元中，每个反应单元的体积只有6. 25 nl，成功代替了传统点样仪和384孔板。他们同时进行了6个样本7 056个单元的平行数字PCR分析。此外， Hansen及其同事采用 MSL技术加工了具有10^6个结构单元的数字PCR 芯片，每个反应单元的体积降低至10 pl，芯片密度达到 440000 /cm2。与微反应室数字PCR系统相比，IFC的特点是通量更高，每个反应单元的体积更小，加样更快。最近，Men等在2mm×2mm区域内加工了82000个 fl 级反应单元，进行数字PCR分析。
液滴数字PCR源于乳液PCR( emulsion PCR) 技术，即将DNA模板与连接引物的磁性微球以极低的浓度(比如单拷贝) 包裹于油水两相形成的纳升至皮升级液滴中进行 PCR 扩增，扩增后的产物富集在磁性微球上，收集破乳后进行测序。通过油水两相间隔得到的以液滴为单位的 PCR 反应体系，比微孔板和 IFC 系统更容易实现小体积和高通量，而且系统简单，成本低，因此成为理想的数字PCR技术平台。Vogelstein 及其同事提出的 BEAMing 技术就是一种基于乳液PCR的数字PCR系统。Lu 等也采用 BEAMing 和连接酶反应实现对 mRNA 的定量分析。Zhou 等在 BEAMing PCR 扩增后破乳，将连接不同产物的磁珠包被在聚丙烯酰胺凝胶中制成磁珠阵列进行荧光检测。但是，上述技术需要将单拷贝 DNA 模板与磁珠同时包裹在一个液滴中，增加了系统的复杂性和定量分析的难度。Beer 等在微流控芯片通道中用油相包裹皮升级液滴，液滴中只包裹了单拷贝 DNA 模板、 PCR引物及试剂，实现了数字PCR 定量分析。Hindson 等在微流控芯片中生成了20000—2000000个体积为 1nl 的液滴，然后将液滴转移到 96 孔板中进行TaqMan PCR扩增，至终点后将液滴从 96 孔板中取出，在微流控芯片中采用流式方法使液滴顺次经过双通道荧光检测器，以1000个液滴/s的速度进行计数。Pekin 等设计了一种微流控芯片，可分别生成包含不同荧光探针和 DNA 模板的液滴，再进行液滴融合，他们将该系统用于KRAS基因突变分析。此外，Shen 等提出了一种通过滑动芯片( SlipChip) 液滴数字PCR系统，设计了带有微流体通道和反应单元的玻璃芯片，上下两片之间用油相密封，通过滑动将样品溶液从流体通道中引入反应单元，同时生成1280个体积仅为2. 6 nl的液滴阵列，在芯片上进行PCR扩增和荧光成像分析。随后，他们还设计了具有不同体积反应单元的 SlipChip，从1 nl变化到125 nl，仅用不到 200个反应单元，理论上可以实现12000个等体积反应单元所能达到的检测浓度范围。Yang 等还合成了凝胶微球作为反应单元进行数字 PCR 扩增和定量分析，与前述液滴相比凝胶微球体系更加稳定和可控，易于收集和保存扩增产物。
近年来随着人类对癌症的不断研究和认识，大量证据表明癌症是一种基因(染色体) 异常变化引起的疾病，普遍认可的异常情况包括癌基因及抑癌基因的突变、插入或缺失等。研究显示，癌症是由体细胞基因突变( somatic mutation)，包括等位基因失衡( allelic imbalance，AI) ，杂合性缺失( loss of heterozygosity，LOH) ，拷贝数变异 ( copy number variations，CNVs) 等一系列基因变异情况引起的。 不过，癌细胞通常与大量正常细胞同时存在，因此，如何从大量正常细胞的 DNA中检测到少量的异常基因成为癌症研究领域关注的焦点问题之一。Vogelstein及其同事提出数字PCR 的初衷就是通过稀释将样品分配至尽可能多的单元中，从而将突变基因分子与大量的野生型基因分离开，在高背景条件下得到少量突变基因的信号。他们以KRAS基因突变为研究对象，对肠癌患者的粪便样品进行了数字 PCR 分析，得到 KRAS 基因第12号密码子点突变率约为4% (4/102)。接着，他们利用数字SNP技术研究了肠癌患者染色体18q杂合性缺失与血管侵入行为的关系，结果显示13个没有发生染色体 18q LOH的肿瘤样本均没有发现血管侵入行为，而 18个具有染色体18q LOH的肿瘤样本中有17个发生了癌细胞的血管侵入。Shih等研究了卵巢浆液性腺癌( ovarian serous carcinoma) 患者腹水中BRAF基因 599位密码子， KRAS 基因12和13位密码子基因突变情况，及其他 7 种标志物在包括卵巢癌、胰腺癌和肠癌患者体液中的基因突变情况。 Hanlon等则对多发性骨髓瘤( multiple myeloma) 病人骨髓活检样本中染色体 13q 14缺失情况进行了研究，不经任何细胞富集技术，他们在 18 个病人中检测到16个LOH( 89% ) ，灵敏度高于传统荧光原位杂交( FISH) 技术。Yung 等考察了35个非小细胞肺癌临床血样中表皮生长因子受体( EGFR) 基因外显子 19 缺失及 L858R 突变情况，与直接测序技术相比，数字PCR技术在突变率低于30%的体液样本中具有更高的灵敏度和检出率。
人类基因组中存在一些范围从kb到Mb片段的亚微观结构变异，主要包括缺失、复制及嵌入等，统称为拷贝数变异( CNVs)。近年来的研究发现， CNVs与包括 HIV-1 感染在内的多种疾病密切相关，对于研究基因变异在生物进化、生理过程及疾病进程等领域具有重要意义。现有的CNVs研究技术包括比较基因组芯片(microarray based comparative genomic hybridization，array-CGH) ，高密度寡核苷酸芯片( high density oligonucleotide array，FISH) ，测序及定量PCR等，但是上述技术在灵敏度和分辨率方面存在缺陷，例如测序只适用于高于 30%的变异率检测，而定量PCR难以分辨低于2倍的CT差异，不足以满足CNVs分析的要求。Ramakrishnan及其同事建立了一种用于研究CNVs的数字PCR模式及统计学方法，通过直接计数目标基因与参照基因(拷贝数为1的基因，例如RNase P)的数目，计算比值，得到目标基因的拷贝数情况，最高分辨率达到15% 。他们研究了40位乳腺癌病人和8位正常人组织样本中HEBB2基因CNVs情况，其中14例癌症组织样本中HEBB2基因 CNVs 高于5。Wang 等对16个细胞系和20个肿瘤样本中EGFR CNVs、外显子19缺失及 L858R突变情况进行了研究，他们在早期切除的肺癌肿瘤样本中检测到微量的对抗癌药物敏感的EGFR突变( 0. 02%—9. 26% )，而且没有发现EGFR基因的拷贝数变异情况。Hindson 等考察了人类基因组中MRGPRX1、染色体X和CYP2D6的CNVs情况，以及癌症病人HEBB2基因CNVs。数字 PCR 比传统定量 PCR 技术具有更高的灵敏度和准确性，因此对于疾病诊断，特别是癌症早期诊断有巨大的应用潜力。
Vogelstein 等利用数字 PCR 及其他技术在分子水平上对肠癌相关的基因变异、肿瘤形成机理及诊断做了大量的研究工作。通常认为在结肠的隐窝中存在一定数量的干细胞，这些干细胞沿着隐窝向上边迁移边分化，直到隐窝的中间位置。当到达隐窝顶部时，干细胞停止分化，开始凋亡，被基质细胞吞噬或脱落进入肠腔。人们推测癌症起源于隐窝底部的干细胞基因突变，扩张并占据整个隐窝。但是，形态学研究表明隐窝上部异常发育，而底部正常。Shih 等对肠癌样本中相同隐窝中不同位置(底部和肠壁)分离得到细胞抑癌基因APC (adenomatous polyposis coli) 进行表达和LOH分析， 他们发现隐窝上部异常细胞的APC突变并不是源于底部细胞，因此推测隐窝干细胞癌变的方向是自上而下的。他们的另一项研究工作表明 APC 基因中某一个特定等位基因的表达降低50% 将导致家族性大肠腺瘤息肉症 (familial adenomatous polyposis，FAP)。他们还考察了良性腺瘤和肿瘤样本中APC等位基因的LOH情况，发现良性腺瘤中 APC 等位基因是平衡的，而28个肿瘤样本中有23个发生等位基因丢失。Shih 等对32个小尺寸腺瘤组织样本中染色体5q、1p、8p、15q 和18q 等位基因情况进行了研究，他们发现超过 90% 的样本中至少存在上述5种当中的一种 AI，55% 样本中 检测到染色体5q AI，67% 样本中存在除5q 的其他 AI。他们的工作说明即使在肿瘤的早期阶段，某些基因的 AI 就已经形成，在肿瘤发展过程中，染色体的失衡在非常早期就开始了。
近年来的研究显示，肿瘤通常会经细胞凋亡途径向体内循环系统释放一定数量的基因组 DNA 分子，可以通过检测这些分子的微卫星 DNA 变化、易位、突变和甲基化等对肿瘤进行检测。Chang等研究了330个临床血液样本( 122个癌症患者，164个非肿瘤病人和44个正常人) 中DNA浓度及与AI与癌症之间的联系，结果显示采用数字SNP技术检测血液样本中 AI 标志物的方法可以作为癌症辅助诊断技术。Traverso 等对近端大肠癌病人粪便样本中 BAT26 基因突变情况进行了分析，结果发现 46 例临床病人组织中检出 BAT26 突变 18 例，其中 17 例可以在病人粪便样品中检出，灵敏度为 37%。而 69 例正常人样本和19 例良性瘤病人粪便样本中均未检出，因此特异性为100%。Dong 等还研究了包括 BAT26、 TP53 和 KRAS 在内的3种大肠癌基因标志物，证明粪便样本基因突变分析是一种理想的无创癌症检测技术。最近，Qi 等采用基于水凝胶微乳液数字PCR 技术对直肠癌病人粪便中 mRNA 进行定量分析，在病人组织( 8例)和粪便( 9例) 样本中检出率达到100%和77% 。
产前诊断( prenatal diagnosis) 是指通过遗传学和影像学检测方法，在子宫内对胎儿进行诊断的技术，是优生学的重要组成部分。现有的遗传学产前诊断方法大都需要通过羊膜穿刺、绒毛取样等侵入性技术从母体子宫内得到胎儿样本(细胞、排泄物等) 再进行遗传学分析。上述技术经历了几十年的发展完善，无论是准确度和安全性都已经得到医学界的公认，但是仍然存在一定程度的胎儿流产和死胎的可能性( 0. 1%—0. 9% ) ，这种有创的取样方法通常给胎儿的父母造成巨大心理压力和焦虑感。1997年Lo等在怀有男性胎儿的孕妇血液中检测到 Y 染色体，揭开了基于母体血液分析的无创产前遗传疾病筛查的研究热潮。然而，这种基于母体血液的检测方法需要解决两个重要问题。首先，必须排除血液样本中存在的大量来自于母体的遗传分子的干扰，从中捕获 10%—20% 的胎儿 DNA 分子，并挖掘其遗传信息。其次，如何从血液中游离的DNA分子中得到染色体数目信息，对于非整倍体(唐氏综合症) 遗传疾病检测尤为重要，针对这两个问题科学家们做了大量研究工作。2007 年 Lo 等首先在384 孔板中利用数字PCR技术进行孕妇血浆中胎儿染色体异常分析，他们提出了两种方法用于21三体综合症的诊断，检测孕妇血液中完全来自胎儿的 PLAC4 mRNA 上的SNP位点 (rs8130833) 的比例( digital-RNA-SNP法) ，以及检测血液中21号染色体与1号染色体的相对含量 ( digital RCD 法) ，可检测血液中25%的胎儿基因。 接着，他们提出了一种称为 digital RMD 的方法和一种根据核酸长度进行选择的 digital NASS 技术， 分别用于单基因疾病的产前检查和血液样本中胎儿 DNA 分子的富集。Fan 等采用集成流路芯片数字 PCR 系统对两种细胞系进行了21三倍体综合症 的原理验证性研究，他们的工作显示最低可检测到 10% 的三倍体基因。他们还进行了18三体和13三体综合症的检测，可在 6h 内给出结果，分析速度比常规1—2周时间大为提高。数字 PCR 技术比传统定量 PCR 具有更高的准确性和分辨率，因此，在遗传学产前检查中具有广泛的应用前景。
DNA 测序技术作为一种重要的生物医学研究手段，推动分子生物学不断进步，更快速、更高通量和更低成本的基因组测序技术正在全世界范围内迅速发展，成为竞争激烈的研究领域之一。Shendure 等和 Margulies 等将微乳液 PCR 技术用于高通量测序的样品制备，通过微乳液技术将单拷贝 DNA 分子或基因组 DNA 片段包裹在皮升级液滴中进行 PCR 扩增，得到数百万计单一序列克隆分子， 继而进行测序。与传统测序技术相比，微乳液 PCR 可以将测序通量提高100 倍，成本降低近10 倍，一次基因组测序可在几小时内完成。高通量测序中样本的标定是非常关键的技术环节，严格控制样本/磁珠比率才能够得到准确的测序结果。White 等将数字 PCR 用于测序样本 DNA 分子的绝对定量分析，不必经过耗时且高成本的样品标定程序，将测序所需样本从微克级降至纳克级，大大简化测序流程，节省时间，并且有效降低成本、提高准确度。
数字 PCR 为高通量基因表达分析提供了强有力的技术平台， Spurgeon 等在 IFC 芯片上进行了18种组织45个基因2304个平行定量 PCR 反应，其结果与传统定量PCR 相一致，并且重现性和准确性优于 DNA 阵列芯片。近年来，人们的关注热点已经逐渐从宏观转向微观，甚至转向单细胞水平基因和蛋白的表达及定位，尤其是单个细胞中由低拷贝核酸的随机转录与翻译事件引起相应蛋白随机表达规律的研究，引起越来越广泛的兴趣。Ottesen 等采用 IFC 芯片实现了对几百个细菌的平行数字 PCR 分析，他们以白蚁肠道螺旋杆菌为研究对象，通过单细胞基因表达分析，揭示了基于核糖体 RNA 并编码同一蛋白(甲酰四氢叶酸合成酶) 的共生菌落之间的内在联系。White等报道了一种高度集成化的 IFC 芯片系统，具有3300个独立单元，每个独立单元的总体积为60 nl，可同时进行细胞捕获、裂解、反转录和定量PCR 等操作，他们将该系统用于K562细胞中microRNA表达分析，hESC细胞中mir-145与其目标基因 OCT4 在干细胞发育不同时期的共调控机制等研究。Warren 等则以单个干细胞为研 究对象，考察了与造血系统相关基因 PU1在造血干细胞和骨髓细胞中的表达情况，并且发现看家基因 GAPDH 在不同细胞中的表达并不是恒定的，因此绝对定量技术对于基因分析显得更为重要。Sindelka等将包埋的非洲爪蟾卵细胞切片，分别进行数字 PCR 分析，研究细胞中 mRNA 的空间分布情况。
近年来研究表明 DNA 甲基化与很多疾病有关， 尤其是癌症，因此基因组 DNA 甲基化位点的检测对于肿瘤的发病机理研究和疾病诊断具有重要意义。Weisenberger 等将数字 PCR 技术用于亚硫酸氢钠基因组测序和 TaqMan定量 PCR(MethyLight) 方法，实现高灵敏和高分辨率 DNA 甲基化检测。 Vogelstein 课题组在 BEAMing 数字 PCR 基础上 发展了甲基化检测方法，在血液和粪便样本中分辨率达到1/5000。采用甲基化Vimentin基因为标志物， 81 位大肠癌病人血液中甲基化检出率达到59%，灵敏度比传统血清癌胚抗原检测法高4倍。
与传统定量 PCR 不同，数字 PCR 通过直接计数的方法，可以实现起始 DNA 模板的绝对定量，因此特别适合用于CT值不能很好分辨的应用领域，例如拷贝数变异、突变检测、等位基因失衡和单细胞基因表达等。对于这些低浓度样品，检测通量越高，可检测到样品信号的概率越大，灵敏度也就越高。近几年数字 PCR 技术发展迅猛，新技术新方法不断出现，全球各大公司对有前景的数字PCR技术竞争激烈，极大地推动了该领域的产业化进程。2006 年美国 Fluidigm 公司率先推出第一款数字 PCR 产品——基于 IFC 技术的 BioMarkTM 系列高通量基因分析芯片系统，将数千个微泵微阀集成到芯片上，代替点样仪可实现高通量加样、加试剂、混合等操作， 可同时进行高37000个反应。微反应室数字PCR系统以BioTrove 的OpenArrayTM为代表，他们用具有3072个微反应室的芯片代替最初的96 /384孔板，大大提高了检测通量，并且降低了反应体积和试剂成本。2009 年，BioTrove被Life Technologies ( Applied Biosystems) 收购。2011 年Bio-Rad收购QuantaLife的液滴数字PCR 技术( ddPCR) ，迅速推出 QX100 液滴数字PCR产品，利用微流控芯片在油水两相间生成约20000个液滴进行高通量数字 PCR 分析。最近，美国RainDance Technologies公司推出了 RainDropTM数字 PCR 系统，可生成 100 万个皮升级液滴，系统灵敏度大为提高。可以说数字 PCR 是继测序技术之后又一个拥有巨大潜力的新兴技术和产业。
但是，目前的数字 PCR 技术仍然存在一些不足，制约了该技术广泛应用。例如，数字 PCR 自身特点决定了其分析的样品通量很低，基本每块芯片上万个反应单元都是针对单一样本的分析。而荧光检测技术的局限性限制了多个芯片的同时检测，因此该技术目前在常规基因表达分析中不具备优势。此外，数字PCR技术的灵敏度(分辨率) 和准确性有待进一步提高和优化，在临床诊断中需要进行大量的比较和验证实验(对照传统方法) 。基于精密仪器和复杂芯片的数字 PCR 技术成本高昂，也是制约其广泛应用的一个原因。相信在未来的几年里将会不断有新的技术和产品出现，不断扩展其应用范围，使之成为新一代分子诊断工具。
来源：《数字 PCR 技术进展》
作者：林彩琴 姚波
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